지식 파편 박스

Override the printer in processing method

fragment-boxer — Tue, 24 Feb 2026 12:06:55 +0900

Home > Acquisition > Sequence > Override the printer in processing method

When creating your sequence, you can select a printer to print the corresponding injection reports and override the printer specified in the processing method. Once a sequence is submitted, you can edit the sequence and change the override printer to print the remaining injections reports. The last selection made is stored and pre-selected the next time you open Acquisition.

분석법에 지정된 프린터를 무시합니다. 시퀀스를 생성할 때, 해당 주입(injection) 리포트를 출력할 프린터를 선택할 수 있으며, 이는 분석법에 명시된 프린터 설정을 대체합니다. 시퀀스가 제출된 후에도 시퀀스를 편집하여 남은 주입 리포트를 출력할 오버라이드 프린터를 변경할 수 있습니다. 마지막에 선택된 설정은 저장되어 다음번에 'Acquisition' 창을 열 때 미리 선택된 상태로 나타납니다.

1. With a sequence loaded in the sequence table, click Run Options.

2. Select a printer from the Injection report printer list.

[Printer specified in processing method]: The printer currently specified in the processing method.

[분석법에 지정된 프린터]: 현재 분석법에 설정되어 있는 프린터입니다.

[Local Printer]: The printer set as the default printer in OpenLab CDS 2.6 or earlier.

[로컬 프린터]: OpenLab CDS 2.6 또는 그 이전 버전에서 기본 프린터로 설정된 프린터입니다.

[Default Printer]: The printer set as the default printer in Control Panel. If no printer has been set as default, the option still appears but without an associated printer.

[기본 프린터]: 제어판에서 기본 프린터로 설정된 장치입니다. 기본 프린터가 설정되어 있지 않아도 옵션은 나타나지만 연결된 프린터 정보는 표시되지 않습니다.

User-defined printers: The shared printer(s) created in Control Panel.

사용자 정의 프린터: 제어판에서 생성된 공유 프린터들입니다.

Use barcodes

fragment-boxer — Fri, 20 Feb 2026 14:46:03 +0900

Use barcoded vials anywhere on sample tray

Home > Acquisition > Sequence > Use barcodes > Use barcoded vials anywhere on sample tray

Barcode values are used when preparing a sequence. You can scan the barcodes, and place the vials anywhere into the instrument. The correct sample will be injected based on the expected barcode from the sequence table.

바코드 값은 시퀀스를 준비할 때 사용됩니다. 바코드를 스캔한 후 바이알을 기기 내 어디에나 배치할 수 있습니다. 시퀀스 테이블에 입력된 '예상 바코드(Expected barcode)'를 기반으로 정확한 샘플이 주입됩니다.

=> 오토샘플러(Autosampler)에 바코드 리더기가 장착된 경우, 기기가 트레이 전체를 스캔하며 바코드를 찾아낸다. 따라서 분석자가 1번 샘플을 50번 칸에 잘못 꽂아도, 바코드만 맞으면 기기가 알아서 찾아가 분석한다. Human Error를 방지하는 강력한 기능.

Preparations

Instrument configuration: Ensure that the option Barcode reader installed is enabled.

Barcode reader installed 옵션이 활성화되어 있는지 확인하십시오.

1. Click Sequence.

2. Create a new sequence, or edit an existing one.

3. Use the barcode reader to scan your barcoded vials and enter them in the Expected Barcode column. You do not need to specify the vial position in the Vial column.

바코드 리더기를 사용하여 바코드 바이알을 스캔하고 Expected Barcode 열에 입력하십시오. 'Vial' 열에 바이알 위치를 지정할 필요가 없습니다.

NOTE

If the expected barcode and vial position are both specified, then the vial position is used.

만약 예상 바코드와 바이알 위치가 모두 지정된 경우, 바이알 위치가 우선적으로 사용됩니다.

4. Complete the Sequence table

5. Click Run.

If an expected barcode cannot be found in the instrument, the run will be skipped.

만약 기기에서 예상된 바코드를 찾을 수 없는 경우, 해당 분석(Run)은 건너뛰게 됩니다.

바코드 스캔 -> 바코드번호가 Expected Barcode 열에 뜸 -> 나머지 열 작성(ex. sample name, method, data file 등등) * vial location은 작성 안해도됨.

Check barcodes during a run

Home > Acquisition > Sequence > Use barcodes > Check barcodes during a run

Barcode values are used during acquisition as a means to trace inputs of samples as well as data outputs. This feature is supported by the following devices: Agilent GC (7683, 7693, CTC PAL, or 7697A Headspace) and Agilent LC Multisamplers (if Barcode reader installed is selected in your LC instrument configuration).

바코드 값은 분석 데이터 획득 과정에서 샘플의 투입뿐만 아니라 데이터 출력 결과를 추적하는 수단으로 사용됩니다. 이 기능은 다음 장치에서 지원됩니다: Agilent GC(7683, 7693, CTC PAL 또는 7697A 헤드스페이스) 및 Agilent LC 멀티샘플러(LC 장비 설정에서 바코드 리더 설치가 선택된 경우).

When creating a sequence table before acquisition, you can enter the expected barcodes into the Expected Barcode column of the sequence table by running a manual scan of the vials or by typing the barcode value directly into the column.

분석을 시작하기 전에 시퀀스 테이블을 만들 때, 바이알(vial)을 수동으로 스캔하거나 바코드 값을 컬럼에 직접 입력하여 '예상 바코드(Expected Barcode)' 항목을 채울 수 있습니다.

If a specified barcode cannot be detected in the instrument, the barcode field is highlighted in the sequence table. In this case, when you submit the sequence, you will receive a warning that one or more barcodes cannot be detected.

지정된 바코드를 기기에서 감지할 수 없는 경우, 시퀀스 테이블의 바코드 칸이 강조 표시됩니다. 이 상태에서 시퀀스를 제출하면 하나 이상의 바코드를 감지할 수 없다는 경고 메시지가 나타납니다.

Once you have entered values in the Expected Barcode column of the sequence table, set the Run Options so you are alerted if there is a mismatch between the expected barcode in your sequence table and what is scanned on the vial at injection time. You can also set the next action of the system if a mismatch is detected.

시퀀스 테이블의 '예상 바코드' 컬럼에 값을 입력한 후, 시퀀스 테이블의 예상 바코드와 주입 시점에 바이알에서 스캔한 바코드가 일치하지 않을 경우 알림이 뜨도록 '실행 옵션(Run Options)'을 설정하세요. 불일치가 감지될 때 시스템이 취할 다음 조치도 설정할 수 있습니다.

1. Click Sequence.

2. With a sequence loaded in the Sequence table, click Run Options.

3. Select Use Barcode Reader Before Injection, and select whether to Inject anyway or Abort current injection if there is a barcode mismatch.

If the vial and barcode match, the injection is performed from the specified vial location.

If the vial and barcode do not match, the injection is either performed from the specified location or is aborted.

4. Click Run.

Use Custom Parameters

fragment-boxer — Fri, 20 Feb 2026 14:20:38 +0900

Home > Acquisition > Sequence > Use Custom Parameters

Custom parameters used in your Sequence table are defined in the Control Panel.

1. Create custom parameters if you have not done so already.

do so : 하나의 숙어처럼 쓰여서 "앞에 나온 대로 하다"라는 뜻

아직 만들지 않았다면 사용자 정의 파라미터를 생성하십시오.

2. Click a cell in the Custom parameters column to display the parameters and associated values in the window below the sequence table.

Custom parameters 열의 셀을 클릭하면 시퀀스 테이블 아래쪽 창에 해당 파라미터와 연결된 값들이 표시됩니다.

3. You can:

Keep all default values.
Click in the Value column to enter, change, or delete the value for that parameter. Mandatory parameters must have a value.

소프트웨어가 기본적으로 제공하는 칸
(바이알 번호, 시료 이름, 분석법 등) 외에

샘플의 추가 정보(로트 번호, 전처리 담당자 등)를 기록해야 할 때가 있다. 이를 위해 사전에 '컨트롤 패널'에서 항목 이름을 먼저 등록하면
시퀀스 테이블에서 사용할 수 있다.

Use Fill Down

fragment-boxer — Fri, 20 Feb 2026 13:42:45 +0900

Home > Acquisition > Sequence > Use Fill Down

Use Fill Down

Use Fill Down to automatically fill in some or all of the cells in the sequence table. Fill down options are inactive if a cell is invalid in the selected row, the selected cell is invalid, or the first cell in the selected column is invalid.

Fill Down 기능을 사용하여 시퀀스 테이블의 셀 일부 또는 전체를 자동으로 채울 수 있습니다. 선택한 행에 유효하지 않은 셀이 있거나, 선택한 셀 자체가 유효하지 않거나, 선택한 열의 첫 번째 셀이 유효하지 않은 경우 Fill Down 옵션은 비활성화됩니다.

1) To fill down rows

1. Enter all required information into a row.

한 행에 모든 필수 정보를 입력하십시오.

2. Move to the left of the table to turn your cursor to a black arrow .

arrow [ˈæroʊ] : 화살표

테이블 왼쪽으로 이동하여 커서를 검은색 화살표 모양으로 바꿉니다.

3. To only fill down specific rows, click and drag to select a portion of the table. The row to fill down must be at the top of the selection.

특정 행만 채우려면 클릭 후 드래그하여 테이블의 일부를 선택하십시오. 채우기의 기준이 되는 행은 반드시 선택 영역의 맨 위에 있어야 합니다.

4. Right-click the row to fill down, and select a fill down option:

기준 행을 우클릭하고 Fill Down 옵션을 선택하십시오.

• Fill down – copy : Fill rows with the same values as the selected row.

선택한 행과 동일한 값으로 행을 채웁니다.

• Fill down – increment : Fill rows with the same values as the selected row, but the Vial, Sample name, and Data file columns will be filled sequentially by an increment of 1. The Sample name and Data file must include a token increment number for this option to be available.

선택한 행과 동일한 값으로 채우되, Vial, Sample name, Data file 열은 1씩 증가하며 순차적으로 채워집니다. 이 옵션을 사용하려면 시료명과 데이터 파일명에 숫자가 포함된 '증분 토큰'이 있어야 합니다.

2) To fill down columns

1. Select a cell in a column to fill down.

채우려는 열의 셀 하나를 선택하십시오.

2. Right-click and select a fill down option. The fill down applies to all cells under the selected cell.

우클릭 후 Fill Down 옵션을 선택하십시오. Fill Down은 선택한 셀 아래의 모든 셀에 적용됩니다.

• Fill down – copy: Fill cells with the same values as the selected cell.

• Fill down – increment: Fill cells in the Vial, Sample name, and Data file columns sequentially by an increment of 1. The Sample name and Data file must include a token increment number for this option to be available.

3) Fill down a Dual Simultaneous sequence

3-1) To fill down rows

1. Enter all required information into a row.

2. Move to the left of the table to turn your cursor to a black arrow .

3. To only fill down specific rows, click and drag to select a portion of the table. The row to fill down must be at the top of the selection.

4. Right-click on the row to fill down, and select a fill down option:

• Fill down – copy: Fill rows with the same values as the selected row. Filling down a front injection row copy the values to all other Front injection rows, and filling down a Back injection row will copy the values to all other Back injection rows.

• Fill down – increment: Fill rows with the same values as the selected row, but the Vial, Sample name, and Data file columns will be filled sequentially by an increment of 1. Filling down a Front injection row will fill incrementally for each Front injection row, and filling down a Back injection row will fill incrementally for each Back injection row. The Sample name and Data file must include a token increment number for this option to be available.

• Fill down – increment serially: Fill rows with the same values as the selected row, but the Sample name, and Data file columns will be filled sequentially by an increment of 1. Cells in the Vial column will be filled sequentially by an increment of 1, independent of Front or Back injection rows. Filling down a Front injection row will fill incrementally for each Front injection row, and filling down a Back injection row will fill incrementally for each Back injection row. The Sample name and Data file must include a token increment number for this option to be available.

3-2) To fill down columns

1. Select a cell in a column to fill down.

2. Right-click and select a fill down option. The fill down applies to all cells under the selected cell.

• Fill down – copy: Fill cells with the same values as the selected cell. Filling down a Front injection value will copy the value to all other Front injection rows, and filling down a Back injection value will copy the value to all other Back injection rows.

• Fill down – increment: Fill cells in the Vial, Sample name, and Data file columns sequentially by an increment of 1. The Front injection values will be filled incrementally for each Front injection row, and the Back injection values will be filled incrementally for each Back injection row. The Sample name and Data file must include a token increment number for this option to be available.

• Fill down – increment serially: Fill cells in the Vial column sequentially by an increment of 1, independent from Front or Back injection rows.

제약•바이오

fragment-boxer — Thu, 22 Jan 2026 23:41:41 +0900

1. 케미컬 의약품 (Chemical Drugs)

원료/제조 : 화학 물질을 합성
분자 구조 : 작고 단순함 (저분자)
안정성 : 열이나 환경에 비교적 안정적
복제약 명칭 : 제네릭 (Generic)
특징 : 구조가 단순해 대량 생산이 쉽고 가격이 저렴함
형태 : 알약(정제)

예시

타이레놀 (성분명: 아세트아미노펜): 가장 대표적인 해열진통제
아스피린: 버드나무 추출물에서 시작했지만 현재는 화학적으로 합성하는 소염진통제

1) 원료단계 : 원료의약품 (API)
= Active Pharmaceutical Ingredient
=> 약효를 내는 핵심 성분 물질
• 형태 : 주로 가루(분말) 또는 액체 원액
• 주요 공정 : 화학 합성, 미생물 발효, 세포 배양
• 산업 특징 : B2B(기업 간 거래) 중심

2) 완제단계 : 완제의약품 (FPP / FDF)
= Finished Pharmaceutical Product (FPP)
= Finished Dosage Form (FDF)
=> 인체에 투여할 수 있는 최종 형태의 약
• 형태 : 알약, 캡슐, 시럽, 주사액 등
• 주요 공정 : 배합, 타정(알약 만들기), 코팅, 포장
• 산업 특징 : B2C(병원/약국/소비자) 중심

2. 바이오 의약품 (Biopharmaceuticals)

원료/제조 : 세포, 유전자 등 살아있는 생물체 배양
분자 구조 : 크고 매우 복잡함 (고분자)
안정성 : 온도, 습도에 매우 민감 (냉장유통 필수)
복제약 명칭 : 바이오시밀러 (Biosimilar)
특징 : 부작용이 적고 난치병 치료에 효과적임
형태 : 주사제

예시

휴미라 (Humira): 류마티스 관절염 등 자가면역질환 치료제로, 오랫동안 전 세계 매출 1위를 기록한 항체 의약품
인슐린 (Insulin): 당뇨병 환자가 맞는 주사입니다. 유전자 재조합 기술로 만든 대표적인 바이오 의약품
코로나19 백신 (mRNA 백신): 화이자나 모더나 백신처럼 유전 정보를 이용해 몸 안에서 항원을 만들게 하는 최첨단 바이오 의약품

1) 원료단계 : 원액 (DS)
= Drug Substance

2) 완제단계 : 완제 (DP)
= Drug Product

Sequence table

fragment-boxer — Wed, 21 Jan 2026 18:49:27 +0900

Home > Acquisition > Sequence > Sequence table

Override method parameters in the Sequence table
Set compound amounts in the sequence table
Customize the sequence table
Sequence table columns
Import a file into the sequence table

Home > Acquisition > Sequence > Sequence table > Override method parameters in the Sequence table

Override method parameters in the Sequence table

If you do not want to use the parameters as specified in the chosen acquisition method, you can set up the sequence table so that certain parameters in the method are modified for specific samples.

1. Click Show column chooser .

2. Select Method Override Columns. The columns listed are parameters that can be overridden. These are dependent on your instrument configuration. See your instrument-specific help for more information.

3. Select the columns for the parameters you want to override.

4. Click OK. The override column appears at the end of your sequence table.

5. For each sample where you want to use a modified parameter, enter the new value in the override column. This value will be used in place of the value defined in the acquisition method. If no value is entered, the acquisition method value will be used.

When the run is opened in Data Analysis, the parameters you have overridden in Acquisition are automatically displayed as columns in the Data Analysis injection list. You may choose to have these columns displayed or not through the Column Chooser, but you cannot edit the overridden values previously entered in Acquisition.

<Override method parameters in the Sequence table>

method를 새로 만들기에는 번거롭지만, 특정 샘플만 다르게 찍어야 할 때 사용한다.

ex) Injection Volume 변경

비타민 음료 속의 비타민 C 함량을 분석한다고 가정할 때 Method에 설정된 기본 주입량은 10μL

1. 상황 설정
샘플 A, B, C: 일반적인 농도의 음료 (기본 10μL 주입)
샘플 D: 농도가 너무 진해서 peak가 잘릴 것 같음 -> 5μL만 주입 필요
샘플 E: 농도가 너무 연해서 peak가 안 보일 것 같음 -> 20μL 주입 필요

2. 시퀀스 테이블 구성 (Sequence Table)
Column Chooser에서 Injection Volume 열을 Override 항목으로 추가하면

[sample name / method / injection volume (override)]
• 샘플A / Vitamin method / -
• 샘플B / Vitamin method / -
• 샘플C / Vitamin method / -
• 샘플D / Vitamin method / 5
• 샘플E / Vitamin method / 20

Home > Acquisition > Sequence > Sequence table > Set compound amounts in the sequence table

Set compound amounts in the sequence table

You can set up the sequence table to ignore the calibrator compounds defined in your data processing method. The new values entered in the sequence table will be used by the processing method to construct the calibration curve.

construct [kənˈstrʌkt] : 구성하다/만들다

data processing method에 정의된 Calibrator compounds 정보를 무시하도록 시퀀스 테이블을 설정할 수 있습니다. 시퀀스 테이블에 입력된 새로운 값들은 data processing method에서 Calibration Curve를 작성하는 데 사용됩니다.

1. Create a sequence with the Data Analysis processing method.

2. Click Show column chooser .

3. Select Compound amounts, and click OK. The Compound amounts column appears in your sequence table.

4. Click a cell in the Compound amounts column. The Compound amounts window opens below the sequence table, displaying the compounds and amounts defined in the processing method.

Compound amounts 열의 셀 하나를 클릭합니다. 시퀀스 테이블 아래에 Compound amounts 창이 열리며, processing method에 정의된 화합물과 그 양이 표시됩니다.

5. For each compound where you want to use a different amount, enter the new value in the Amount in sample column.

다른 양을 사용하고 싶은 각 화합물에 대해 Amount in sample 열에 새로운 값을 입력합니다.

=> Amount in method : method에 설정된 농도
=> Amount in sample : 실제 샘플 농도

ISTD amounts shown in the Compound amounts table are taken from the ISTD amt 1 column in the sequence table and cannot be edited.

화합물 함량 테이블에 표시된 내부표준물질(ISTD) 함량은 시퀀스 테이블의 'ISTD amt 1' 열에서 가져오며 수정할 수 없습니다.

=> 내부표준물질은 검량선 보정의 기준이기 때문에, 개별 화합물 수정 창이 아닌 시퀀스 메인 테이블의 전용 열에서만 관리된다.

If your processing method defines two ISTD compounds with the same name on different channels, only one line is displayed for both compounds in the Compound amounts table.

처리 방법에서 서로 다른 채널에 동일한 이름의 ISTD 화합물이 정의된 경우, Compound amounts 테이블에는 하나의 행만 표시됩니다.

=> 내부표준물질(ISTD)의 이름이 겹치는 상황은 보통 여러 개의 검출기(예: UV 채널 1과 UV 채널 2)를 동시에 사용하거나, 질량 분석기(MS)에서 여러 반응을 모니터링할 때 발생한다.

ex)
1. 상황: 두 채널에서 동일한 ISTD 사용
채널 A(254nm)와 채널 B(280nm) 두 곳 모두에서 '내부표준물질 X'가 검출된다고 가정한다.

메서드 설정:
채널 A의 ISTD 이름: "Internal_STD" / 함량: 10 ppm
채널 B의 ISTD 이름: "Internal_STD" / 함량: 10 ppm

소프트웨어 표시 (OpenLab):
이름과 함량이 모두 같기 때문에, Compound amounts 창에는 "Internal_STD" 한 줄만 표시된다. 이름(name)을 논리적 키(key)로 사용하기 때문에 채널이 달라도 동일 화합물로 취급하기 때문이다.

If two ISTD compounds have the same name but different amounts, the Amount in sample and the Corrected amount display Multiple.

이름은 같지만 양이 다른 두 ISTD 화합물이 있는 경우, Amount in sample과 Corrected amount에 Multiple이 표시됩니다.

=> 데이터 충돌이 있음을 사용자에게 알리는 경고 표시다. 시스템이 단일 값으로 통합할 수 없음을 명확히 표시한다.

이름은 같은데 함량이 다르게 입력된 경우 (Multiple 표시)

1. 상황:
채널 A의 ISTD: 이름 "Internal_STD" / 함량 10 ppm
채널 B의 ISTD: 이름 "Internal_STD" / 함량 20 ppm (실수 또는 설정 차이)

2. 소프트웨어 표시:
이때 Amount in sample 열에는 숫자 대신 Multiple이라는 글자가 뜬다. 이 때 'Internal_STD'라는 이름 하나에 10이랑 20이라는 서로 다른 값이 들어있어서 무엇을 기준으로 계산해야 할지 모르겠다.라고 시스템이 경고를 보내는 것이다.

3. 따라서 가급적이면 채널별로 이름을 다르게 지정하는 것이 좋다 (예: ISTD_254nm, ISTD_280nm). 이렇게 하면 소프트웨어가 혼동할 여지가 없다.

If two ISTD compounds have the same name and the same amounts, that value is displayed in the Amount in sample and Corrected amount.

이름과 양이 동일한 두 ISTD 화합물이 있는 경우, 해당 값이 Amount in sample과 Corrected amount에 표시됩니다.

=> 시스템이 논리적으로 동일한 내부표준으로 판단했음을 의미

After the data is acquired and processed, the new values are used to create the calibration curve and calculate results for the run. The new values can be viewed in the Injection List window of the Data Analysis program.

데이터 취득과 처리가 완료되면, 새로운 값이 검량선을 생성하고 해당 주입(run)의 결과 계산에 사용됩니다. 새로운 값들은 데이터 분석 프로그램의 Injection List 창에서 확인할 수 있습니다.

<Set compound amounts in the sequence table>

표준품을 매번 정확히 똑같은 농도로 만들기 어려울 때

ex) 카페인 정량 분석
카페인 표준품을 농도별로 5단계(Level 1~4) 준비해서 검정 곡선을 그리려고 한다.

1. 상황 설정
Method 설정값: Level 3의 농도가 50 ppm으로 저장됨.
실제 조제 상황: 현재 표준액을 정밀하게 저울로 달아보니, 오차가 발생하여 실제 농도가 51.2 ppm이 됨.
문제 발생: 메서드 파일을 수정하자니 다른 분석법에도 영향을 줄 것 같고, 그냥 50 ppm으로 계산하자니 오차가 생김.

2. Compound Amounts 기능 사용
[시퀀스 행 / 샘플 이름 / Sample Type / Compound Amounts (입력창) / 실제 계산에 쓰이는 값]
• 1 / Cal_Level 1 / Calibrator 10 ppm (기본값) / 10 ppm
• 2 / Cal_Level 2 / Calibrator 20 ppm (기본값) / 20 ppm
• 3 / Cal_Level 3 / Calibrator 51.2 (수정) / 51.2 ppm (우선 적용)
• 4 / Cal_Level 4 / Calibrator 100 ppm (기본값) / 100 ppm

3. 내부표준물질(ISTD)의 경우
만약 여기에 내부표준물질을 10 ppm씩 넣었다면:
하단 수정 창에서 ISTD 농도는 수정할 수 없게 회색으로 비활성화된다.
대신 시퀀스 메인 화면의 ISTD amt 1 열에 10이라고 적혀 있는 값을 시스템이 자동으로 가져와서 계산에 쓴다.

Home > Acquisition > Sequence > Sequence table > Customize the sequence table

Customize the sequence table

Rearrange and resize columns, and select which columns to display.

1. To rearrange the column order, click on a column header to select the column. Click the column header again and drag the column to the desired location in the table.

2. To resize columns, click and drag the right border of a column header.

3. To freeze a column, click the pin icon in a column header. Frozen columns automatically move to the left of the table and will stay in place when the table is scrolled horizontally. Click the pin icon again to un-freeze the column.

stay in place : 제자리에 머물다
horizontally : 수평으로, 가로로

고정된 열은 자동으로 표의 왼쪽으로 이동하며, 표를 가로로 스크롤할 때 해당 위치에 고정되어 있습니다.

4. To select which columns are displayed in the table, click Show column chooser .

5. Select or clear columns to appear in the Sequence table, and click OK.

Home > Acquisition > Sequence > Sequence table > Sequence table columns

Sequence table columns

The following columns are available in the sequence table.

[Column / Description / Allowed value and range]

Action

An indication of the action performed at that line of the sequence. The value is read only. Actions include Inject (perform an injection) and Create report (no injection, but the specified data will be processed, and a sequence summary report will be generated).
Allowed value and range : -

시퀀스의 해당 행에서 수행되는 동작을 나타내는 표시이며, 이 값은 읽기 전용입니다. 동작에는 실제로 주입을 수행하는 Inject와, 주입은 하지 않지만 지정된 데이터를 처리하고 시퀀스 요약 보고서를 생성하는 Create report가 포함됩니다.

No. / Action / Vial / Sample name / Acq.method
1 / Inject / P1-A1 / BLANK / Impurity.amx
2 / Inject / P1-A2 / System suitability / Impurity.amx
3 / Inject / P1-A3 / STD / Impurity.amx
4 / Inject / P1-A4 / SA / Impurity.amx
5 / Create report / - / - / - (Action 이외의 열은 모두 비활성)

*참고 : Create report 행을 누르면 아래칸에
Template / Lable selection / Printer / File format
설정 칸이 따로 뜬다.

Acq. method

The name of the method used to acquire the raw data (acquisition method). If using a method in a subfolder, the subfolder path relative to the root path must be used. For example, <sub-folder>\<method file name>.
Allowed value and range : Any character, no limit

root path: 최상위 경로(뿌리 경로)

raw data를 획득하는 데 사용되는 메서드(Acquisition method)의 이름입니다. 하위 폴더에 있는 메서드를 사용하는 경우, 루트 경로를 기준으로 한 하위 폴더 경로를 사용해야 합니다. 예를 들어, <하위 폴더><메서드 파일 이름>과 같습니다.

=> 소프트웨어 입장에서는 이미 데이터가 저장되는 기본 장소(Root)가 정해져 있다.

전체 경로: C:\LabData\Project\Method01
루트 경로가 C:\LabData
입력할 값: Project\Method01 (=> relative path)

Barcode

The barcode label as it has been read from the sample vial. The value is read only and only intended for automation purposes. See Check barcodes during a run.
Allowed value and range : Any character, no limit

label [ˈleɪbl] : 라벨
as : ~하는 대로 (접속사)
be intended for : ~을 목적으로 하다

샘플 바이알에서 읽어 들인 바코드 라벨입니다. 이 값은 읽기 전용이며 자동화 목적으로만 사용됩니다. '실행 중 바코드 확인' 섹션을 참조하십시오.

Bracket

Displays how calibration standards are bracketed according to the selected Bracketing mode. This column is populated only when a Sequence Creation Template is applied that contains a bracketing mode. This column cannot be imported into the sequence table from a CSV or TSV file.
Allowed value and range : Any character, no limit

Bracketing : 분석의 정확도를 위해 시료 분석 앞뒤로 표준품을 배치하는 방식.

선택된 브래케팅 모드에 따라 검정 표준물이 어떻게 그룹화(브래케팅)되는지 표시합니다. 이 열은 브래케팅 모드가 포함된 시퀀스 생성 템플릿이 적용된 경우에만 데이터가 채워집니다. 이 열은 CSV 또는 TSV 파일에서 시퀀스 테이블로 불러올 수 없습니다.

Compound amounts

An indication if the amount of a calibration sample has been modified. The compound amount is defined in the calibration parameters in the method, but may be adjusted for individual injections. When clicking in this column for a calibration standard, the window shows the actual amounts in the sample and amounts defined in the method.
Allowed value and range : Numbers only, 7decimal.9decimal limit, for example: 1234567.123456789

decimal [ˈdesɪml] : 소수/십진법의
7decimal.9decimal : 소수점 앞 7자리, 소수점 뒤 9자리

검정 샘플의 함량이 수정되었는지 여부를 나타냅니다. 화합물 함량은 메서드의 검정 파라미터에 정의되어 있지만, 개별 주입에 대해 조정될 수 있습니다. 검정 표준물에 대해 이 열을 클릭하면 창에 샘플의 실제 함량과 메서드에 정의된 함량이 표시됩니다.

하위창에 뜨는 내용
=> Sample : / Method :
=> Type / Compound Name / Amount in sample / Amount in method

Custom parameters

If you have configured custom fields for your project in Control Panel, you can view and edit the values in this column. Click in the column to view Sample and Compound custom parameters and values. Whether or not a customer parameter is mandatory is specified in Control Panel. Values of mandatory parameters cannot be deleted. This column cannot be imported into the sequence table from a CSV or TSV file.
Allowed value and range :
Text: characters only
Number: numbers only
Date/time: entry format and validation is set by local Windows date/time format

컨트롤 패널에서 프로젝트에 대한 사용자 정의 필드를 구성한 경우, 이 열에서 해당 값을 보고 편집할 수 있습니다. 열을 클릭하여 샘플 및 화합물 사용자 정의 파라미터와 값을 확인하십시오. 고객(사용자) 파라미터가 필수인지 여부는 컨트롤 패널에서 지정됩니다. 필수 파라미터의 값은 삭제할 수 없습니다.

하위창
=> *Indicates Mandatory Entry
=> Parameter / Value

Data file

The name of the individual injection's .dx file that gets saved to storage. You can manually change the data file name; however, you cannot have duplicate file names.
Default value uses the token <D>-<##>. For example 2017-03-13 10-17-58-07-00-01.
Allowed value and range : 255 characters, special characters will be resolved to - at runtime

저장소에 저장되는 개별 주입의 .dx 파일 이름입니다. 데이터 파일 이름을 수동으로 변경할 수 있지만, 파일 이름이 중복될 수는 없습니다.

기본값은 토큰 <D>-<##>을 사용합니다. 예를 들어 2017-03-13 10-17-58-07-00-01과 같습니다.

255자 이내여야 하며, 특수 문자는 실행 시 하이픈(-)으로 변경(치환)됩니다.

Description

A description of the sample.
Allowed value and range : 4096 character limit

샘플에 대한 설명입니다.

*참고 : 하위창에 Description 창이 떠서 기록할 수 있다.

Dil. factor1 / Dil. factor2 / Dil. factor3 / Dil. factor4 / Dil. factor5

The dilution factor per sample. Used to calculate the concentration for all compounds.
Allowed value and range : Numbers only, 5decimal.5decimal limit, for example: 12345.12345

샘플당 희석 계수입니다. 모든 화합물의 농도를 계산하는 데 사용됩니다.

=> 시료를 몇 배 희석했는지 적으면, 나중에 소프트웨어가 결과값에 이 값을 곱해서 최종 농도를 자동으로 계산해 준다.

ex) 농도가 높은 샘플을 2배->5배->10배 희석했을 경우
Dil. factor1 : 2
Dil. factor2 : 5
Dil. factor3 : 10
=> 시스템이 2×5×10 배 계산

Expected barcode

The barcode entered manually by running a manual scan of the vials or by typing the barcode value directly into the column. See Check barcodes during a run.
Allowed value and range : Any character, no limit

바이알을 수동으로 스캔하거나 열에 바코드 값을 직접 입력하여 수동으로 입력한 바코드입니다. '실행 중 바코드 확인' 섹션을 참조하십시오.

=> 시스템이 읽기 전에 사용자가 "이 바이알엔 이 바코드가 있어야 해"라고 미리 적어두는 기대값.

Frac. Recovery Location

The location in the recovery device where the eluate is stored after a fraction is collected. This column is only available when your instrument configuration contains a fraction recovery device.
Allowed value and range : Any valid vial location. Allowed values determined by fraction recovery device specifications.

eluate [éljuèit ] : 용출액

분취(Fraction) 수집 후 용출액이 저장되는 회수 장치의 위치입니다. 이 열은 기기 구성에 분취 수집 장치가 포함된 경우에만 사용할 수 있습니다.

Frac. Start Location

The vial number in the fraction collection tray where the first fraction is collected. This column is only available when your instrument configuration contains a fraction collection device.
Allowed value and range : Any valid vial location. Allowed values determined by fraction collection device specifications.

첫 번째 분취물(Fraction)이 수집되는 분취 수집 트레이 내의 바이알 번호입니다. 이 열은 기기 구성(Configuration)에 분취 수집 장치(Fraction collector)가 포함되어 있는 경우에만 사용할 수 있습니다.

Inj/Vial

The number of times a line in the sequence will be run. For example, a value of 3 for line 1 in the sequence table will re-run line 1 three times and generate 3 different data files.
Allowed value and range : Numbers only, 999 character limit

시퀀스의 한 라인이 실행될 횟수입니다. 예를 들어 시퀀스 테이블의 1번 라인에 값이 3이면 1번 라인을 세 번 다시 실행하고 3개의 서로 다른 데이터 파일을 생성합니다.

Injection source

The location where the sample will be injected. Options are instrument dependent. This column cannot be imported into the sequence table from a CSV or TSV file.
Allowed value and range : Select from available options

샘플이 주입될 위치입니다. 옵션은 기기에 따라 다릅니다. 이 열(항목)은 CSV 또는 TSV 파일로부터 시퀀스 테이블로 불러올 수 없습니다.

*options 예시

1. Als (Automatic Liquid Sampler) : 로봇 바늘이 정해진 바이알 위치로 가서 샘플을 자동으로 주입함. (가장 일반적)

2. External : 장비 외부의 다른 장치(예: 가스 샘플링 밸브나 다른 전처리 장비)로부터 샘플을 공급받음.

3. No injection / Instrument Blank : 바늘이 샘플을 빨아들이지 않고 그냥 기계만 작동시키거나, 아무것도 없는 상태(공시료)로 돌려 기기 내부의 오염도를 체크함.

또는

1. As Method
2. Manual
3. Als

ISTD amt1 / ISTD amt2 / ISTD amt3 / ISTD amt4 / ISTD amt5

The amounts of each of the internal standards being used in the analysis. Values entered in the sequence table override the ISTD amount in the method. If no value is entered, the amount in the method is used.
Allowed value and range : Numbers only, 5decimal.5decimal limit, for example: 12345.12345

분석에 사용되는 각 내부 표준물질(Internal Standard)의 함량입니다. 시퀀스 테이블에 입력된 값은 메서드의 내부 표준물질 함량보다 우선합니다(무시하고 덮어씁니다).

Label selection

The label for an injection run. Used to create sequence summary reports.
Allowed value and range : Alphanumeric characters only

Alphanumeric [ælfənuː|merɪk] : 알파벳 등의 문자 또는 숫자를 조합한

주입 실행에 대한 라벨입니다. 시퀀스 요약 보고서를 생성하는 데 사용됩니다.

=> 보고서에서 데이터를 쉽게 분류하기 위해 붙이는 꼬리표 역할.

System suitability같은 경우 소프트웨어가 자동으로 인식할 수 있으나 그러지 못하는 경우에는 Label 기능을 통해 사용자 정의 분류표를 만들 수 있다.

예를 들어 원료 제조사별 비교시
A사 원료 샘플들과 B사 원료 샘플들을 따로 묶어서 평균값, 표준편차 등을 보고 싶을 때 (Label에 'Vendor_A', 'Vendor_B' 입력)한다.

Level

* 참고 : Sample type을 Cal.Std. 로 설정했을때만 Level 열에 입력가능하다.

For calibration standards, the level of the standard.
Allowed value and range : Numbers only, 99 character limit

검정 표준물(Calibration standards)의 경우, 표준물의 레벨입니다.

LIMS ID1 / LIMS ID2 / LIMS ID3

The keys required for connection to and from a LIM system.
Allowed value and range : Any character, no limit

Multiplier1 / Multiplier2 / Multiplier3 / Multiplier4 / Multiplier5

The multiplication factor per sample. Used to calculate the concentration for all compounds.
Allowed value and range : Numbers only, 5decimal.5decimal limit, for example: 12345.12345

multiplication [ˌmʌltɪplɪˈkeɪʃn] : 곱셈

샘플당 곱셈 계수입니다. 모든 화합물의 농도를 계산하는 데 사용됩니다.

<dilution factor  vs multiplication factor>

• dilution factor : 샘플을 희석한 정도를 되돌리는 것
1g -> 10mL, 희석 배수는 10
계산: (기기에서 측정된 값) * 10 = 실제 샘플 농도

• multiplication Factor :  최종 단위나 함량을 맞추기 위한 보정값

1. 단위 변환 (Unit Conversion)
기기에서는 (ug/mL) (ppm) 단위로 결과가 나오는데, 최종 보고서에는 % (백분율)로 적어야 할 때

기기 값이 10,000 ppm일 때 이게 1%가 되어야 한다면?
=> Multiplication Factor에 0.0001을 입력.
=> 기기 측정값(10,000) * 0.0001 = 1% 로 리포트에 자동 출력.

2. 수분 보정 (Moisture Correction / Dry Basis)
샘플에 포함된 수분을 제외하고 건조물 상태에서의 농도를 구해야 할 때

샘플의 수분 함량이 20%라면, 실제 성분 농도에 1.25를 곱해야 건조물 기준 농도가 나온다.
=> Multiplication Factor에 1.25를 입력
=> 기기가 측정한 농도에 1.25가 곱해져서, 수분이 없는 상태의 보정된 값이 리포트에 나외다.

3. 시료 채취량 보정 (Sample Weight Correction)
표준법에는 "샘플 1g을 취한다"고 되어 있는데, 실제로는 0.98g이나 1.02g을 취했을 때 그 오차를 일괄 보정할 수 있다.

1g 정량 대신 0.8g만 사용했다면, 농도가 낮게 측정됨.
.=> 1 ÷ 0.8 = 1.25이므로, Multiplication Factor에 1.25를 입력.
=> 적게 넣어서 낮게 나온 결과값을 다시 1g 기준으로 뻥튀기 해서 정확한 함량을 찾아준다.

<결론>
최종농도 = 기기측정값 *  dilution factor * multiplication factor

Proc. method

The name of the method used to analyze the data (processing method). If using a method in a subfolder, the subfolder path relative to the root path must be used. For example, <sub-folder>\<method file name>.
Allowed value and range : Any character, no limit

데이터를 분석(처리)하는 데 사용되는 메서드(Processing method)의 이름입니다.

Run type

*참고 : Sample type을 Cal.Std. 로 설정했을때만 Run type 열에 입력가능하다.

Clear all calibration: All previous calibration points will be removed when processing this standard.

Clear all calibration : 이 표준물을 처리할 때 이전의 모든 검정 포인트가 제거됩니다.

=> 기존 검정 곡선을 싹 지우고 새로 곡선을 그릴 때 사용.

Clear Calibration at level: All previous calibration points of the level of the calibration standard will be removed when processing this standard.

Clear Calibration at level : 이 표준물을 처리할 때 해당 레벨의 이전 검정 포인트가 제거됩니다.

=> 특정 농도 단계의 데이터만 새로 고침하고 싶을 때 사용합니다.

Empty: A new point will be added to the calibration curve. If a calibration point already exists for the current injection, the application calculates the average value of all existing calibration points for the given target.

Empty : 검정 곡선(Calibration curve)에 새로운 포인트가 추가됩니다. 현재 주입에 대해 검정 포인트가 이미 존재하는 경우, 애플리케이션은 해당 타겟에 대한 모든 기존 검정 포인트의 평균값을 계산합니다.

=> 동일한 농도 레벨(예: 10ppm)을 여러 번 찔렀을 때, 점을 여러 개 찍는 게 아니라 그 값들을 하나로 합쳐서 평균을 내어 곡선에 반영한다.

Allowed value and range : Select from available options

Sample amount

The weight of the sample before dilution.
Allowed value and range : Numbers only, 5decimal.5decimal limit, for example: 12345.12345

희석 전 샘플의 중량입니다.

Sample name

The name of the sample.
Allowed value and range : 255 character limit

Sample prep method

The name of the method used to prepare the sample. If using a method in a subfolder, the subfolder path relative to the root path must be used. For example, <sub-folder>\<method file name>.
Allowed value and range : Any character, no limit

Sample type

The type of sample.
Allowed value and range : Select from available options

Target1 Target2 Target3 Target4 Target5

For mass spectrometry, the masses or formulas that you want to use for the MS sample purity calculation. You can mix molecular weight and formulas, for example, C12 H14 N4 O4 S, 284.
Allowed value and range : Validation is case sensitive

질량 분석(MS)의 경우, MS 샘플 순도 계산에 사용하려는 질량(Masses) 또는 화학식(Formulas)입니다. 분자량(Molecular weight)과 화학식을 혼합해서 사용할 수 있습니다. 예를 들어, C12 H14 N4 O4 S, 284와 같습니다.

Vial

The vial number or plate location.
Allowed value and range : Configuration-dependent, validated by instrument

Volume

The volume of the sample you want to inject at run time. Usually defined in your acquisition method, you can manually override your method injector volume settings in this column. Units of measurement are defined by the instrument configuration.
Allowed value and range : Configuration-dependent, validated by instrument

실행 시 주입하려는 샘플의 부피입니다. 보통 획득 메서드(Acquisition method)에 정의되어 있지만, 이 열에서 메서드의 주입기 부피 설정을 수동으로 재정의(Override)할 수 있습니다. 측정 단위는 기기 구성(Instrument configuration)에 의해 정의됩니다.

Home > Acquisition > Sequence > Sequence table > Import a file into the sequence table

Import a file into the sequence table

You can import CSV (comma-separated value) or TSV (tab-separated value) files, or you can import a sequence file from a result set into your sequence table. CSV or TSV files must be saved in UTF-8 format. Imported files do not have to include every column present in your sequence table, but they cannot include more columns than are present in your sequence table. See Sequence table columns for a list of all columns available in the sequence table.

CSV 또는 TSV 파일을 불러오거나, Result set에 있는 시퀀스 파일을 시퀀스 테이블로 불러올 수 있습니다. CSV 또는 TSV 파일은 반드시 UTF-8 형식으로 저장되어야 합니다.(*참고 : UTF-8은 전 세계 문자를 지원하는 표준 인코딩 방식) 불러온 파일에 시퀀스 테이블의 모든 열이 포함될 필요는 없지만, 시퀀스 테이블에 있는 열보다 더 많은 열을 포함할 수는 없습니다. 시퀀스 테이블에서 사용할 수 있는 모든 열 목록은 'Sequence table columns' 섹션을 참조하십시오.

An example of a CSV file for a sequence is shown below.

The following table lists the supported column headers that can be imported into your sequence table. Custom parameters can also be included if the name of the column header matches the sample customer parameter defined in the project settings.

다음 표는 시퀀스 테이블로 불러올 수 있는 지원되는 열 머리글(Header) 목록입니다. 열 머리글의 이름이 프로젝트 설정에 정의된 샘플 고객 매개변수와 일치하면 사용자 정의 매개변수도 포함될 수 있습니다.

Acq Method*
Data file
Description
Dil. factor 1
Dil. factor 2
Dil. factor 3
Dil. factor 4
Dil. factor 5
Expected barcode
Frac. start location
Inj/Vial
Injection source
ISTD amt 1
ISTD amt 2
ISTD amt 3
ISTD amt 4
ISTD amt 5
Level
LIMS ID 1
LIMS ID 2
LIMS ID 3
Multiplier 1
Multiplier 2
Multiplier 3
Multiplier 4
Multiplier 5
Processing method*
Recovery location
Run type
Sample amount
Sample name
Sample prep method*
Sample type
Target 1
Target 2
Target 3
Target 4
Target 5
Vial
Volume

* Methods are shown relative to the method root path defined in the project settings. If using a method in a subfolder, the subfolder path relative to the root path must be used. For example, <sub-folder>\<method file name>.

1. Click Sequence, and then click Table.

2. Drag and drop a file from another location on your computer into the Sequence window.

Click Import Sequence from CSV/TSV or Result Set and select:

Import Sequence from CSV to navigate to and select a file. Only CSV and TSV files are accepted. To import correctly, the file must have the exact same column headings as the sequence table (for example, the file must have the column heading Acq. Method not Acquisition Method).

Import Sequence from Result Set to navigate to and select a sequence file.

Sample tray

fragment-boxer — Wed, 21 Jan 2026 13:58:03 +0900

Home > Acquisition > Sequence > Sample tray
Sample tray

Home > Acquisition > Sequence > Sample tray > View sample trays

View sample trays

If you are using an LC instrument with a Multisampler or standard sampler, you can view your sequence in the sample tray. After the trays have been positioned in your Multisampler, edit the 3D image of your trays, and then view your sequence in a tray. Only the user controlling the LC instrument will be able to reconfigure the instrument. Any attempt to reconfigure the instrument is recorded in the Activity Log.

1. Create or open a sequence.

2. Click Show sample trays.

3. The sample tray appears as a floating window that you can click and drag to any location. Sample trays are displayed on the left, and fraction/recovery trays are shown on the right.

샘플 트레이는 클릭하여 원하는 위치로 드래그할 수 있는 플로팅 창(부유 창) 형태로 나타납니다. 샘플 트레이는 왼쪽에 표시되고, 분취/회수 트레이는 오른쪽에 표시됩니다.

Set up the 3D image to match the physical trays in your Multisampler. If you are using a standard sampler, the correct tray type will automatically be detected by the instrument and display.

실제 멀티샘플러에 있는 물리적 트레이와 일치하도록 3D 이미지를 설정하십시오. 표준 샘플러를 사용하는 경우, 장비가 올바른 트레이 유형을 자동으로 감지하여 표시합니다.

To select the specific tray being used in the Multisampler, select the tray in the 3D image, and select the tray type from the drop-down list.

멀티샘플러에서 사용 중인 특정 트레이를 선택하려면, 3D 이미지에서 트레이를 선택한 후 드롭다운 목록에서 트레이 유형을 선택하십시오.

If you change your tray type, the available vial numbers may also change. If your sequence table contains injections assigned to a vial location that does not exist on the tray, the sequence rows will become invalid, and you will not be able to run the sequence. To validate the rows, you can change the vial location or delete the invalid rows.

트레이 유형을 변경하면 사용 가능한 바이알 번호도 변경될 수 있습니다. 시퀀스 테이블에 트레이에 존재하지 않는 바이알 위치로 할당된 주입 항목이 포함되어 있으면, 해당 시퀀스 행은 유효하지 않게 되며 시퀀스를 실행할 수 없습니다. 행을 유효하게 만들려면 바이알 위치를 변경하거나 유효하지 않은 행을 삭제하십시오.

To add a tray to a Multisampler 3D image, select a blank space in the 3D image, and select the tray type from the drop-down list.

4. Select a tray in the 3D image to view the sample configuration for that tray. The tray highlighted in blue is the tray configuration displayed.

해당 트레이의 샘플 구성을 보려면 3D 이미지에서 트레이를 선택하십시오. 파란색으로 강조된 트레이가 현재 표시되고 있는 트레이 구성입니다.

If you add a row to your sequence table or change the Sample type in your sequence table, the vial location in the tray updates automatically. If there are multiple rows with the same vial location, the sample type of the latest injection row determines the color of the vial location.

시퀀스 테이블에 행을 추가하거나 시퀀스 테이블에서 샘플 유형을 변경하면, 트레이의 바이알 위치가 자동으로 업데이트됩니다. 동일한 바이알 위치에 여러 행이 있는 경우, 가장 최근 주입 행의 샘플 유형이 바이알 위치의 색상을 결정합니다.

The vial location in the sample tray displays a color based on the sample type and injection status:

Red highlight: Aborted
Light blue highlight Acquiring
Light green highlight: Acquired
Green: Sample
Blue: Calibration standard
Grey: Blank
Purple: QC check
Orange: Double blank
Magenta: Spike
Brown: System Suit
Clear/white: None

Home > Acquisition > Sequence > Sample tray > Use the sample tray to select sequence via vials

Use the sample tray to select sequence via vials

You can graphically select vial locations in the sample tray to define them in the Sequence table. The sample tray also allows the graphical selection of fraction start and recovery locations. Selections in the sample tray can be used to populate the sample vial, fraction start location, and recovery location values quickly.

샘플 트레이에서 그래픽으로 바이알 위치를 선택하여 시퀀스 테이블에 정의할 수 있습니다. 샘플 트레이는 분취 시작 및 회수 위치의 그래픽 선택도 허용합니다. 샘플 트레이에서의 선택은 샘플 바이알, 분취 시작 위치 및 회수 위치 값을 신속하게 채우는 데 사용될 수 있습니다.

When one row is selected in the Sequence table, select a vial, fraction, or recovery location in the sample tray to update the value in the Sequence table for the selected line.

시퀀스 테이블에서 한 행이 선택되었을 때, 샘플 트레이에서 바이알, 분취 또는 회수 위치를 선택하면 선택된 줄의 시퀀스 테이블 값이 업데이트됩니다.

When any number of rows are selected in the Sequence table, the corresponding vials are highlighted in the sample tray by a blue circle.

시퀀스 테이블에서 임의의 수의 행이 선택되면, 해당 바이알은 샘플 트레이에서 파란색 원으로 강조 표시됩니다.

When multiple rows are selected in the Sequence table, click and drag a selection in the sample tray to update the selected rows with the selected vials. Vials are defined sequentially according to the pattern displayed while dragging on the sample tray. Click and drag selections for multiple rows is not available when updating the fraction start or recovery locations.

시퀀스 테이블에서 여러 행이 선택되었을 때, 샘플 트레이에서 선택 영역을 클릭하고 드래그하면 선택된 바이알들로 선택된 행들이 업데이트됩니다.

=> 일괄 할당(Bulk Assignment) 기능. 예를 들어 테이블에서 10줄을 선택하고 트레이에서 바이알 10개를 드래그하면 순서대로 번호가 매겨진다.

바이알은 샘플 트레이에서 드래그하는 동안 표시되는 패턴에 따라 순차적으로 정의됩니다.

=> 사용자가 지그재그나 가로, 세로 방향으로 드래그할 때 화면에 미리 보이는 진행 방향(Pattern) 그대로 시퀀스 번호가 부여된다.

분취 시작 또는 회수 위치를 업데이트할 때는 여러 행에 대한 클릭 및 드래그 선택을 사용할 수 없습니다.

=> 분취 위치만큼은 한 줄 한 줄 직접 확인하며 입력해야함.

If more vial locations are selected in the sample tray than there are number of rows selected in the Sequence table, additional lines are added to the Sequence table.

시퀀스 테이블에서 선택된 행의 수보다 샘플 트레이에서 더 많은 바이알 위치가 선택되면, 시퀀스 테이블에 추가 행이 추가됩니다.

=> 자동 행 생성(Auto-generation) 기능. 예를 들어 테이블에서 5줄만 만들어놨어도 트레이에서 10개를 드래그하면, 나머지 5줄이 자동으로 시퀀스 테이블에 생성된다.

Select sequence sample types

fragment-boxer — Wed, 21 Jan 2026 13:55:10 +0900

Home > Acquisition > Sequence > Select sequence sample types

Sample types are used in a sequence to describe each item being processed. You select sample types in the sequence table or as part of a sequence template.

Table: Sample type descriptions

Sample

A sample with unknown amounts of analytes being analyzed.

analyte [ˈænəlaɪt] : 분석물(분석 대상 성분)

분석 중인 분석물의 양을 알 수 없는 샘플.

=> 우리가 실제로 함량을 알고자 하는 미지 시료(Unknown Sample)

Blank

A sample without any analytes that is treated like a sample. It is used as a signal-to-noise reference for all subsequent samples and for system suitability. If an ISTD method is being used, then the Blank usually contains the internal standard.

분석물이 포함되지 않은 샘플로, 일반 샘플처럼 취급됩니다. 이것은 이후의 모든 샘플에 대한 신호 대 잡음(S/N) 비율의 기준 및 시스템 적합성 확인을 위해 사용됩니다. 만약 내부 표준법(ISTD)이 사용되는 경우, Blank는 일반적으로 내부 표준물질을 포함합니다.

Double blank

Sometimes called "solvent blank", it is used to prove that no chromatographic artifacts are coming from the instrument flow path for that particular column.

artifacts [ˈɑːrtɪfækt] : 아티팩트(인공적인 오류/흔적)

Double blank : 때로는 "solvent blank"라고 불리며, 특정 컬럼에 대해 기기 흐름 경로에서 크로마토그래피 가짜 피크가 나오지 않음을 증명하는 데 사용됩니다

=> 일반적인 Blank는 Analyte만 빼지만 ISTD는 넣는 경우가 많다. 하지만 Double Blank는 내부 표준물질조차 넣지 않은 순수 용매그 자체를 의미한다. 그래서 '이중으로 비어 있다'는 뜻의 Double을 쓴다.
=> Double Blank를 찍었는데도 피크가 나온다면, 그것은 시료의 문제가 아니라 기기 시스템(Flow path) 어딘가가 오염되었다는 강력한 증거가 된다.

Cal. Std. (Calibration standard)

A sample with a known amount of analyte that is used as a reference to create or update a calibration table in the processing method.

processing method에서 검량선(Calibration Table)을 작성하거나 업데이트하기 위해 참조로 사용되는, 분석물의 양을 알고 있는 샘플입니다.

QC check

A sample with a known amount of analyte that is used to verify and prove that the calibration is correct.

Calibration이 정확한지 확인하고 증명하기 위해 사용되는, 분석물의 양을 알고 있는 샘플입니다.

=> 검량선을 만든 후, 분석 중간에 이 샘플을 찍어서 기기가 여전히 정확한 값을 내고 있는지(유효성) 점검하는 용도

Spike

A sample with a known amount of standard added.

일정량의 표준물질이 첨가된 샘플.

=> Spike : 못, 찌르다

- Sample (시료): 우리가 분석하고자 하는 전체 덩어리 (예: 오렌지 주스 한 병)
- Analyte (분석물): 샘플 안에 있는 분석하고자하는 성분. (예: 주스 속 비타민 C)
- Matrix (매트릭스/기질): 샘플에서 Analyte을 제외한 나머지 모든 성분. (예: 주스 속의 물, 당분, 구연산, 색소 등)

순수용매와 다르게 실제 시료(Matrix) 안에는 분석을 방해하는 수만 가지 물질이 섞여 있다.

① 회수율(Recovery) 테스트
예를 들어, 강물에 오염물질 A가 100만큼 들어있다고 예상되는데, 전처리 과정(필터링, 가열 등)에서 20만큼 사라질 수도 있다. 이를 확인하기 위해, 아무것도 없는 깨끗한 물에 표준물질 A를 100만큼 강제로 넣고(Spiking) 분석한다.
만약 결과가 80만 나온다면 현재 분석법은 20% 정도 손실이 발생하는 것임을 알 수 있다.

② 매트릭스 방해 효과 (Matrix Effect)
똑같은 비타민 C 10mg이라도, 순수한 물에 녹였을 때와 걸쭉한 오렌지 주스에 들어있을 때 기기가 읽어내는 신호의 세기가 다를 수 있다. 주스 속의 당분이나 단백질이 기기 센서를 가리거나 반응을 방해하기 때문이다.
따라서 실제 시료에 표준품을 넣었을 때와 순수 용매에 넣었을 때의 결과값이 다르다면, 시료 속의 불순물이 분석을 방해하고 있다는 증거가 된다.

Sys Suit

A sample that is run to demonstrate that system is working correctly as expected. This sample is typically run before running other samples.

시스템이 예상대로 올바르게 작동하고 있음을 증명하기 위해 실행되는 샘플. 이 샘플은 일반적으로 다른 샘플을 실행하기 전에 실행됩니다.

Home > Acquisition > Sequence > Sample tray
Sample tray

Sample tray

Home > Acquisition > Sequence > Sample tray > View sample trays

View sample trays

1. Create or open a sequence.

2. Click Show sample trays.

3. The sample tray appears as a floating window that you can click and drag to any location. Sample trays are displayed on the left, and fraction/recovery trays are shown on the right.

샘플 트레이는 클릭하여 원하는 위치로 드래그할 수 있는 플로팅 창(부유 창) 형태로 나타납니다. 샘플 트레이는 왼쪽에 표시되고, 분취/회수 트레이는 오른쪽에 표시됩니다.

Set up the 3D image to match the physical trays in your Multisampler. If you are using a standard sampler, the correct tray type will automatically be detected by the instrument and display.

실제 멀티샘플러에 있는 물리적 트레이와 일치하도록 3D 이미지를 설정하십시오. 표준 샘플러를 사용하는 경우, 장비가 올바른 트레이 유형을 자동으로 감지하여 표시합니다.

To select the specific tray being used in the Multisampler, select the tray in the 3D image, and select the tray type from the drop-down list.

멀티샘플러에서 사용 중인 특정 트레이를 선택하려면, 3D 이미지에서 트레이를 선택한 후 드롭다운 목록에서 트레이 유형을 선택하십시오.

트레이 유형을 변경하면 사용 가능한 바이알 번호도 변경될 수 있습니다. 시퀀스 테이블에 트레이에 존재하지 않는 바이알 위치로 할당된 주입 항목이 포함되어 있으면, 해당 시퀀스 행은 유효하지 않게 되며 시퀀스를 실행할 수 없습니다. 행을 유효하게 만들려면 바이알 위치를 변경하거나 유효하지 않은 행을 삭제하십시오.

To add a tray to a Multisampler 3D image, select a blank space in the 3D image, and select the tray type from the drop-down list.

4. Select a tray in the 3D image to view the sample configuration for that tray. The tray highlighted in blue is the tray configuration displayed.

해당 트레이의 샘플 구성을 보려면 3D 이미지에서 트레이를 선택하십시오. 파란색으로 강조된 트레이가 현재 표시되고 있는 트레이 구성입니다.

시퀀스 테이블에 행을 추가하거나 시퀀스 테이블에서 샘플 유형을 변경하면, 트레이의 바이알 위치가 자동으로 업데이트됩니다. 동일한 바이알 위치에 여러 행이 있는 경우, 가장 최근 주입 행의 샘플 유형이 바이알 위치의 색상을 결정합니다.

The vial location in the sample tray displays a color based on the sample type and injection status:

Red highlight: Aborted
Light blue highlight Acquiring
Light green highlight: Acquired
Green: Sample
Blue: Calibration standard
Grey: Blank
Purple: QC check
Orange: Double blank
Magenta: Spike
Brown: System Suit
Clear/white: None

Home > Acquisition > Sequence > Sample tray > Use the sample tray to select sequence via vials

Use the sample tray to select sequence via vials

샘플 트레이에서 그래픽으로 바이알 위치를 선택하여 시퀀스 테이블에 정의할 수 있습니다. 샘플 트레이는 분취 시작 및 회수 위치의 그래픽 선택도 허용합니다. 샘플 트레이에서의 선택은 샘플 바이알, 분취 시작 위치 및 회수 위치 값을 신속하게 채우는 데 사용될 수 있습니다.

When one row is selected in the Sequence table, select a vial, fraction, or recovery location in the sample tray to update the value in the Sequence table for the selected line.

시퀀스 테이블에서 한 행이 선택되었을 때, 샘플 트레이에서 바이알, 분취 또는 회수 위치를 선택하면 선택된 줄의 시퀀스 테이블 값이 업데이트됩니다.

When any number of rows are selected in the Sequence table, the corresponding vials are highlighted in the sample tray by a blue circle.

시퀀스 테이블에서 임의의 수의 행이 선택되면, 해당 바이알은 샘플 트레이에서 파란색 원으로 강조 표시됩니다.

시퀀스 테이블에서 여러 행이 선택되었을 때, 샘플 트레이에서 선택 영역을 클릭하고 드래그하면 선택된 바이알들로 선택된 행들이 업데이트됩니다.

=> 일괄 할당(Bulk Assignment) 기능. 예를 들어 테이블에서 10줄을 선택하고 트레이에서 바이알 10개를 드래그하면 순서대로 번호가 매겨진다.

바이알은 샘플 트레이에서 드래그하는 동안 표시되는 패턴에 따라 순차적으로 정의됩니다.

=> 사용자가 지그재그나 가로, 세로 방향으로 드래그할 때 화면에 미리 보이는 진행 방향(Pattern) 그대로 시퀀스 번호가 부여된다.

분취 시작 또는 회수 위치를 업데이트할 때는 여러 행에 대한 클릭 및 드래그 선택을 사용할 수 없습니다.

=> 분취 위치만큼은 한 줄 한 줄 직접 확인하며 입력해야함.

If more vial locations are selected in the sample tray than there are number of rows selected in the Sequence table, additional lines are added to the Sequence table.

시퀀스 테이블에서 선택된 행의 수보다 샘플 트레이에서 더 많은 바이알 위치가 선택되면, 시퀀스 테이블에 추가 행이 추가됩니다.

=> 자동 행 생성(Auto-generation) 기능. 예를 들어 테이블에서 5줄만 만들어놨어도 트레이에서 10개를 드래그하면, 나머지 5줄이 자동으로 시퀀스 테이블에 생성된다.

Create sequences

fragment-boxer — Wed, 21 Jan 2026 13:48:48 +0900

Home > Acquisition > Sequence > Create sequences

Home > Acquisition > Sequence > Create sequences > Create a sequence manually

Create a sequence manually

Enter the sample types, acquisition and processing methods, files names, calibration settings, and number of injections (Inj/Vial) for each run in a sequence. To create a Dual Simultaneous sequence, see Create a Dual Simultaneous sequence.

1. Click Sequence, and then click Table.

2. The values last entered into the table are displayed.

Click to add an injection, report, or wait line to the end of the sequence.
Click to insert an injection, report, or wait line above the selected line.
Click to delete the selected line.

3. Enter the appropriate values in the sequence table columns for each run in the sequence you are creating. To do this, you may:

Click Create a new Sequence to clear all entries in the table and enter your entries from scratch.
Edit the existing details in the sequence table by typing over them or using the menu and token buttons to edit the existing text. You can also use Fill Down to populate the table.
Clear the table and import a CSV, TSV, or sequence file to populate the table.

If the acquisition method, processing methods, or sample prep method defined in the sequence table are obsoleted, then the sequence cannot be submitted.

4. Click Save Sequence to save your sequence file (*.sqx).

Home > Acquisition > Sequence > Create sequences > Create a Dual Simultaneous sequence

Create a Dual Simultaneous sequence

If you have an 8890, 7890 or 6890 GC, you can simultaneously inject 2 samples to maximize the throughput of your analysis and obtain results quickly. Front and Back injections are acquired simultaneously, with each injection treated as an individual sample in the result set.

throughput [ˈθruːpʊt] : 처리량, 생산율

This procedure describes how to set up the sequence table to accommodate the dual injections.

accommodate [əˈkɒmədeɪt] : 수용하다, 맞추다

Addition hardware required is:

2 Automatic Liquid Sampler injectors - model 7693, 7683A, or 7683B
OR: 2 Gas Sampling Valves

1. Click Sequence, and then click Table.

2. Click New > New Dual Simultaneous Sequence. To open a saved sequence, see Open a sequence file.

The sequence table contains two rows for each injection cycle: the Front injection (1F) and the Back injection (1B).

3. Select the Acquisition method and (optionally) the Sample Prep method for the injection cycle. The methods selected for the Front injection are automatically used for the Back injection.

4. Select the Processing method for the Front injection and Back injection in the injection cycle.

5. Select the Injection source for the injection cycle, either GC Injector – Dual or GC Valve – Both, depending on the available hardware.

6. Optional: Add barcodes to the sequence table.

7. If necessary, you can Add, Insert, or Delete injection cycles from the sequence table.

Click to add an injection, report, or wait line to the end of the sequence.
Click to insert an injection, report, or wait line above the selected line.
Click to delete the selected line.

The background color of the injection cycle rows alternate between white and yellow so you can easily see which vials are being injected at the same time.

alternative [ˈɔːltəneɪt] : 번갈아 나오다, 대안의, 교대의
alternate between A and B :A와 B 사이를 번갈아 나타나다

You can filter the dual sequence table to display only the front or back injections. Click F to display only the front injections. Click B to display only the back injections.

8. Edit the existing details in the sequence table by typing them or using the menu and token buttons to edit the existing text. You can also use Fill Down to populate the table.

Fill Down : 아래로 채우다
populate [ˈpɒpjuleɪt] : (데이터를) 채우다, 거주시키다

9. If necessary, right-click in the sequence table to:

Copy line(s) or Cut line(s) of an injection cycle(s).
Insert copied line(s) above or Insert copied line(s) below the selected injection cycle.

10. Select the injection cycles to submit as part of the run. By default, all injection cycles are selected.

11. To save your results to a sub-folder inside your Results folder, change the Result path by clicking browse and creating a new folder. You cannot save your results to an existing .rslt folder.

12. The Result name defaults to the last filename used for this instrument and project. Enter a filename by typing in the field or using the token button. If left blank, the instrument name and local date & time is used for the filename.

13. Select Save result as:

1) One result set to save the result as a single result set with all sequence rows.

For example:
ResultSetName: A1, B1, A2, B2, A3, B3, A4, B4, A5, B5

2) Two result sets (Front/Back) to save the results as separate front and back result sets.

For example:
ResultSetName-Front: A1, A2, A3, A4, A5
ResultSetName-Back: B1, B2, B3, B4, B5

3) Separate single injections to save the results as single samples.

For example:
ResultSetName1: A1
ResultSetName2: B1
ResultSetName3: A2
ResultSetName4: B2

14. Click Save Sequence to save your Dual Simultaneous sequence file (*.sqx).

Home > Acquisition > Sequence > Create sequences > Create a sequence for mass-based fraction collection (MBFC)

Create a sequence for mass-based fraction collection (MBFC)

To create a sequence for MBFC, you first have to configure your instruments and the acquisition method in OpenLab CDS.

Configure instruments

Your instrument must contain a Fraction collector (FC) and a Mass Detector (MSD) module.

MSD: Check the Fraction collection enabled option to access the Mass-based fraction collection parameters section in the acquisition method.

FC: The MSD must be listed in Peak Detectors section (detected automatically).

Configure acquisition method

You have to configure two parts of the method to support MBFC:

Mass detector (MSD)
Fraction collector

Configure Mass detector (MSD)

1. Select the Advanced Acquire section.

If you have selected the Fraction collection enabled option when configuring the instrument, the Mass-based fraction collection parameters section is then displayed.

2. Define the compounds to be considered to trigger fraction collection.

3. Click to add a target compound(s).

4. Define the Compound name and the Monoisotopic mass or the Compound formula.
If you define a formula, OpenLab CDS calculate the Monoisotopic automatically.

Monoisotopic mass(단일 동위원소 질량)
Compound formula

화합물 이름과 단일 동위원소 질량 또는 화합물 식을 정의합니다. 화학식을 정의하면, OpenLab CDS가 단일 동위원소 질량을 자동으로 계산합니다.

=> MSD는 화합물의 질량을 기준으로 작동한다. Monoisotopic mass(단일 동위원소 질량)는 가장 흔한 동위원소들의 질량 합으로, 질량 분석에서 가장 정확한 기준점이 된다.C10H20O와 같은 분자식을 입력하면 소프트웨어 내부의 원자량 데이터베이스를 통해 질량값을 자동으로 도출하여 사용자의 편의성을 높인다.

5. Select Adducts ions and the Charge State.
Ions will interact with the neutral molecule in the ionization source to create the ion that will be tracked by the Mass detector to trigger a fraction.
You can select one or several adducts per compound.
OpenLab CDS sets Positive or Negative automatically in the Polarity column according to the selected adduct.

첨가 생성물 이온(Adducts ions)과 전하 상태(Charge State)를 선택합니다. 이온들은 이온화원에서 중성 분자와 상호작용하여, 분획을 트리거하기 위해 질량 검출기에 의해 추적될 이온을 생성합니다.
화합물당 하나 또는 여러 개의 첨가 생성물을 선택할 수 있습니다. OpenLab CDS는 선택된 첨가 생성물에 따라 극성(Polarity) 열에 양이온(Positive) 또는 음이온(Negative)을 자동으로 설정합니다.

=> 질량 분석기는 중성 분자를 측정할 수 없고 '이온' 상태만 측정한다. 따라서 실제 검출되는 질량은 [M+H]+ 또는 [M+Na]+ 처럼 특정 이온이 붙은 형태(m/z)이므로 이를 정확히 지정해줘야 한다.

=> 이온화원(Ion Source) 내에서의 물리적 반응을 설명한다. 중성 상태의 시료에 양성자(H^+) 등이 결합하여 전하를 띠게 되어야만 MSD가 이를 감지하고 분획기를 작동시킬 수 있다.

=> 실제 분석 시 하나의 물질이 여러 형태의 이온(예: H^+ 결합형과 Na^+ 결합형 모두)으로 나타날 수 있으므로, 검출 확률을 높이기 위해 여러 이온을 동시에 추적하도록 설정하는 것이다.

=> 예를 들어 H^+ adduct는 양이온 모드(+), Cl^- adduct는 음이온 모드(-)에서 검출되므로 사용자의 실수를 방지하기 위해 소프트웨어가 이를 자동 매칭한다.

The Fraction collection peak trigger column propose five options (A, B, C, D , NOT). These options correspond to the Fraction Collector configured in the fraction collector part of the method.

You cannot edit the m/z column. It corresponds to the mass / charge that the MSD detects. Value is calculated with m= [monoisotopic mass + adduct mass] and z= charge of the ion generated.

In the Mass-based fraction collection parameters table, you define:

the MSD parameters values used by the mass detector to ionize and detect the ions (fragmentor voltage, detector gain factor, dwell time),
the Fraction target mass column among three values T1, T2 and T3.Those three values correspond to three sequence columns displayed for a MBFC instrument: SQ: T1 fraction target mass 1 to SQ: T3 fraction target mass 3. You have the option to define target masses (monoisotopic masses) to be used instead of the ones defined in the method during the sample acquisition. This allows you to override method target masses by keeping the ionization parameters, adducts and charges and MSD parameters defined in the method by the value defined in corresponding Fraction target mass column of the sequence.

Configure Fraction Collector

The Fraction collector interface supports both UV and Mass based fraction collection.

To configure the Fraction collector:

Select Enabled to activate Fraction collection (common for both UV and MS).
Select the MS tab of the table.
Fill out the corresponding fields in the table.

Use: Check as many signals as expected.
Peak Detector: Select the MSD module.
Used Signal: Select the signals configured in the Mass-based fraction collection parameters table for the Mass detector (A, B, C, D, NOT in Use Signal)
Peak Detection Mode: Select the integration parameter used to detect a peak and assign a value in the corresponding field (ex : threshold). You can define graphically the value from the Fraction preview section by using an already acquired chromatogram as template.

In the Trigger Combinations section, you define the conditions for peaks detected in both MS and UV detectors.

In the Advanced section, you can configure the delays (time or volume) to be applied when collecting a fraction. In case of MBFC, you cannot use delay volume, only delay time. Select either Use time and define a time in seconds or As calibrated (Time)

As calibrated (Time) uses the delay time computed by the delay calibration tool that is stored in the Fraction collector firmware

As calibrated (Time) can be used only if delay calibration was done with an acquisition method similar to the current one (same Main pump flow, Make-up pump flow, Split rate, Delay Coil).

Other options (Use Volume, As calibrated) are dedicated to UV and cannot be used for MBFC.

Home > Acquisition > Sequence > Select sequence sample types

Select sequence sample types

Sample types are used in a sequence to describe each item being processed. You select sample types in the sequence table or as part of a sequence template.

Table: Sample type descriptions

Sample

A sample with unknown amounts of analytes being analyzed.

analyte [ˈænəlaɪt] : 분석물(분석 대상 성분)

분석 중인 분석물의 양을 알 수 없는 샘플.

=> 우리가 실제로 함량을 알고자 하는 미지 시료(Unknown Sample)

Blank

분석물이 포함되지 않은 샘플로, 일반 샘플처럼 취급됩니다. 이것은 이후의 모든 샘플에 대한 신호 대 잡음(S/N) 비율의 기준 및 시스템 적합성 확인을 위해 사용됩니다. 만약 내부 표준법(ISTD)이 사용되는 경우, Blank는 일반적으로 내부 표준물질을 포함합니다.

Double blank

Sometimes called "solvent blank", it is used to prove that no chromatographic artifacts are coming from the instrument flow path for that particular column.

artifacts [ˈɑːrtɪfækt] : 아티팩트(인공적인 오류/흔적)

Double blank : 때로는 "solvent blank"라고 불리며, 특정 컬럼에 대해 기기 흐름 경로에서 크로마토그래피 가짜 피크가 나오지 않음을 증명하는 데 사용됩니다

=> 일반적인 Blank는 Analyte만 빼지만 ISTD는 넣는 경우가 많다. 하지만 Double Blank는 내부 표준물질조차 넣지 않은 순수 용매그 자체를 의미한다. 그래서 '이중으로 비어 있다'는 뜻의 Double을 쓴다.
=> Double Blank를 찍었는데도 피크가 나온다면, 그것은 시료의 문제가 아니라 기기 시스템(Flow path) 어딘가가 오염되었다는 강력한 증거가 된다.

Cal. Std. (Calibration standard)

A sample with a known amount of analyte that is used as a reference to create or update a calibration table in the processing method.

processing method에서 검량선(Calibration Table)을 작성하거나 업데이트하기 위해 참조로 사용되는, 분석물의 양을 알고 있는 샘플입니다.

QC check

A sample with a known amount of analyte that is used to verify and prove that the calibration is correct.

Calibration이 정확한지 확인하고 증명하기 위해 사용되는, 분석물의 양을 알고 있는 샘플입니다.

=> 검량선을 만든 후, 분석 중간에 이 샘플을 찍어서 기기가 여전히 정확한 값을 내고 있는지(유효성) 점검하는 용도

Spike

A sample with a known amount of standard added.

일정량의 표준물질이 첨가된 샘플.

=> Spike : 못, 찌르다

- Sample (시료): 우리가 분석하고자 하는 전체 덩어리 (예: 오렌지 주스 한 병)
- Analyte (분석물): 샘플 안에 있는 분석하고자하는 성분. (예: 주스 속 비타민 C)
- Matrix (매트릭스/기질): 샘플에서 Analyte을 제외한 나머지 모든 성분. (예: 주스 속의 물, 당분, 구연산, 색소 등)

순수용매와 다르게 실제 시료(Matrix) 안에는 분석을 방해하는 수만 가지 물질이 섞여 있다.

① 회수율(Recovery) 테스트
예를 들어, 강물에 오염물질 A가 100만큼 들어있다고 예상되는데, 전처리 과정(필터링, 가열 등)에서 20만큼 사라질 수도 있다. 이를 확인하기 위해, 아무것도 없는 깨끗한 물에 표준물질 A를 100만큼 강제로 넣고(Spiking) 분석한다.
만약 결과가 80만 나온다면 현재 분석법은 20% 정도 손실이 발생하는 것임을 알 수 있다.

② 매트릭스 방해 효과 (Matrix Effect)
똑같은 비타민 C 10mg이라도, 순수한 물에 녹였을 때와 걸쭉한 오렌지 주스에 들어있을 때 기기가 읽어내는 신호의 세기가 다를 수 있다. 주스 속의 당분이나 단백질이 기기 센서를 가리거나 반응을 방해하기 때문이다.
따라서 실제 시료에 표준품을 넣었을 때와 순수 용매에 넣었을 때의 결과값이 다르다면, 시료 속의 불순물이 분석을 방해하고 있다는 증거가 된다.

Sys Suit

A sample that is run to demonstrate that system is working correctly as expected. This sample is typically run before running other samples.

시스템이 예상대로 올바르게 작동하고 있음을 증명하기 위해 실행되는 샘플. 이 샘플은 일반적으로 다른 샘플을 실행하기 전에 실행됩니다.

Home > Acquisition > Sequence > Sample tray
Sample tray

Sample tray

Home > Acquisition > Sequence > Sample tray > View sample trays

View sample trays

1. Create or open a sequence.

2. Click Show sample trays.

3. The sample tray appears as a floating window that you can click and drag to any location. Sample trays are displayed on the left, and fraction/recovery trays are shown on the right.

샘플 트레이는 클릭하여 원하는 위치로 드래그할 수 있는 플로팅 창(부유 창) 형태로 나타납니다. 샘플 트레이는 왼쪽에 표시되고, 분취/회수 트레이는 오른쪽에 표시됩니다.

Set up the 3D image to match the physical trays in your Multisampler. If you are using a standard sampler, the correct tray type will automatically be detected by the instrument and display.

실제 멀티샘플러에 있는 물리적 트레이와 일치하도록 3D 이미지를 설정하십시오. 표준 샘플러를 사용하는 경우, 장비가 올바른 트레이 유형을 자동으로 감지하여 표시합니다.

To select the specific tray being used in the Multisampler, select the tray in the 3D image, and select the tray type from the drop-down list.

멀티샘플러에서 사용 중인 특정 트레이를 선택하려면, 3D 이미지에서 트레이를 선택한 후 드롭다운 목록에서 트레이 유형을 선택하십시오.

트레이 유형을 변경하면 사용 가능한 바이알 번호도 변경될 수 있습니다. 시퀀스 테이블에 트레이에 존재하지 않는 바이알 위치로 할당된 주입 항목이 포함되어 있으면, 해당 시퀀스 행은 유효하지 않게 되며 시퀀스를 실행할 수 없습니다. 행을 유효하게 만들려면 바이알 위치를 변경하거나 유효하지 않은 행을 삭제하십시오.

To add a tray to a Multisampler 3D image, select a blank space in the 3D image, and select the tray type from the drop-down list.

4. Select a tray in the 3D image to view the sample configuration for that tray. The tray highlighted in blue is the tray configuration displayed.

해당 트레이의 샘플 구성을 보려면 3D 이미지에서 트레이를 선택하십시오. 파란색으로 강조된 트레이가 현재 표시되고 있는 트레이 구성입니다.

시퀀스 테이블에 행을 추가하거나 시퀀스 테이블에서 샘플 유형을 변경하면, 트레이의 바이알 위치가 자동으로 업데이트됩니다. 동일한 바이알 위치에 여러 행이 있는 경우, 가장 최근 주입 행의 샘플 유형이 바이알 위치의 색상을 결정합니다.

The vial location in the sample tray displays a color based on the sample type and injection status:

Red highlight: Aborted
Light blue highlight Acquiring
Light green highlight: Acquired
Green: Sample
Blue: Calibration standard
Grey: Blank
Purple: QC check
Orange: Double blank
Magenta: Spike
Brown: System Suit
Clear/white: None

Home > Acquisition > Sequence > Sample tray > Use the sample tray to select sequence via vials

Use the sample tray to select sequence via vials

샘플 트레이에서 그래픽으로 바이알 위치를 선택하여 시퀀스 테이블에 정의할 수 있습니다. 샘플 트레이는 분취 시작 및 회수 위치의 그래픽 선택도 허용합니다. 샘플 트레이에서의 선택은 샘플 바이알, 분취 시작 위치 및 회수 위치 값을 신속하게 채우는 데 사용될 수 있습니다.

When one row is selected in the Sequence table, select a vial, fraction, or recovery location in the sample tray to update the value in the Sequence table for the selected line.

시퀀스 테이블에서 한 행이 선택되었을 때, 샘플 트레이에서 바이알, 분취 또는 회수 위치를 선택하면 선택된 줄의 시퀀스 테이블 값이 업데이트됩니다.

When any number of rows are selected in the Sequence table, the corresponding vials are highlighted in the sample tray by a blue circle.

시퀀스 테이블에서 임의의 수의 행이 선택되면, 해당 바이알은 샘플 트레이에서 파란색 원으로 강조 표시됩니다.

시퀀스 테이블에서 여러 행이 선택되었을 때, 샘플 트레이에서 선택 영역을 클릭하고 드래그하면 선택된 바이알들로 선택된 행들이 업데이트됩니다.

=> 일괄 할당(Bulk Assignment) 기능. 예를 들어 테이블에서 10줄을 선택하고 트레이에서 바이알 10개를 드래그하면 순서대로 번호가 매겨진다.

바이알은 샘플 트레이에서 드래그하는 동안 표시되는 패턴에 따라 순차적으로 정의됩니다.

=> 사용자가 지그재그나 가로, 세로 방향으로 드래그할 때 화면에 미리 보이는 진행 방향(Pattern) 그대로 시퀀스 번호가 부여된다.

분취 시작 또는 회수 위치를 업데이트할 때는 여러 행에 대한 클릭 및 드래그 선택을 사용할 수 없습니다.

=> 분취 위치만큼은 한 줄 한 줄 직접 확인하며 입력해야함.

If more vial locations are selected in the sample tray than there are number of rows selected in the Sequence table, additional lines are added to the Sequence table.

시퀀스 테이블에서 선택된 행의 수보다 샘플 트레이에서 더 많은 바이알 위치가 선택되면, 시퀀스 테이블에 추가 행이 추가됩니다.

=> 자동 행 생성(Auto-generation) 기능. 예를 들어 테이블에서 5줄만 만들어놨어도 트레이에서 10개를 드래그하면, 나머지 5줄이 자동으로 시퀀스 테이블에 생성된다.

Open a sequence file

fragment-boxer — Wed, 21 Jan 2026 13:46:35 +0900

Home > Acquisition > Sequence > Open a sequence file

1. Select Sequence > Table.

2. Click Open a sequence .

(To open a sequence that was edited while being run, load it from its result set. See Import a file into the sequence table.)

3. Navigate to and select the sequence file (*.sqx).

navigate (to) : 이동하다 / 찾아가다

4. Click Open. The selected sequence is displayed in the Sequence table.

5. Modify the sequence as required, or reuse it as is.

Home > Acquisition > Sequence > Create sequences

Create sequences

Home > Acquisition > Sequence > Create sequences > Create a sequence manually

Create a sequence manually

1. Click Sequence, and then click Table.

2. The values last entered into the table are displayed.

Click to add an injection, report, or wait line to the end of the sequence.
Click to insert an injection, report, or wait line above the selected line.
Click to delete the selected line.

3. Enter the appropriate values in the sequence table columns for each run in the sequence you are creating. To do this, you may:

Click Create a new Sequence to clear all entries in the table and enter your entries from scratch.
Edit the existing details in the sequence table by typing over them or using the menu and token buttons to edit the existing text. You can also use Fill Down to populate the table.
Clear the table and import a CSV, TSV, or sequence file to populate the table.

If the acquisition method, processing methods, or sample prep method defined in the sequence table are obsoleted, then the sequence cannot be submitted.

4. Click Save Sequence to save your sequence file (*.sqx).

Home > Acquisition > Sequence > Create sequences > Create a Dual Simultaneous sequence

Create a Dual Simultaneous sequence

throughput [ˈθruːpʊt] : 처리량, 생산율

This procedure describes how to set up the sequence table to accommodate the dual injections.

accommodate [əˈkɒmədeɪt] : 수용하다, 맞추다

Addition hardware required is:

2 Automatic Liquid Sampler injectors - model 7693, 7683A, or 7683B
OR: 2 Gas Sampling Valves

1. Click Sequence, and then click Table.

2. Click New > New Dual Simultaneous Sequence. To open a saved sequence, see Open a sequence file.

The sequence table contains two rows for each injection cycle: the Front injection (1F) and the Back injection (1B).

3. Select the Acquisition method and (optionally) the Sample Prep method for the injection cycle. The methods selected for the Front injection are automatically used for the Back injection.

4. Select the Processing method for the Front injection and Back injection in the injection cycle.

5. Select the Injection source for the injection cycle, either GC Injector – Dual or GC Valve – Both, depending on the available hardware.

6. Optional: Add barcodes to the sequence table.

7. If necessary, you can Add, Insert, or Delete injection cycles from the sequence table.

Click to add an injection, report, or wait line to the end of the sequence.
Click to insert an injection, report, or wait line above the selected line.
Click to delete the selected line.

The background color of the injection cycle rows alternate between white and yellow so you can easily see which vials are being injected at the same time.

alternative [ˈɔːltəneɪt] : 번갈아 나오다, 대안의, 교대의
alternate between A and B :A와 B 사이를 번갈아 나타나다

You can filter the dual sequence table to display only the front or back injections. Click F to display only the front injections. Click B to display only the back injections.

8. Edit the existing details in the sequence table by typing them or using the menu and token buttons to edit the existing text. You can also use Fill Down to populate the table.

Fill Down : 아래로 채우다
populate [ˈpɒpjuleɪt] : (데이터를) 채우다, 거주시키다

9. If necessary, right-click in the sequence table to:

Copy line(s) or Cut line(s) of an injection cycle(s).
Insert copied line(s) above or Insert copied line(s) below the selected injection cycle.

10. Select the injection cycles to submit as part of the run. By default, all injection cycles are selected.

11. To save your results to a sub-folder inside your Results folder, change the Result path by clicking browse and creating a new folder. You cannot save your results to an existing .rslt folder.

13. Select Save result as:

14. Click Save Sequence to save your Dual Simultaneous sequence file (*.sqx).

Home > Acquisition > Sequence > Create sequences > Create a sequence for mass-based fraction collection (MBFC)

Create a sequence for mass-based fraction collection (MBFC)

To create a sequence for MBFC, you first have to configure your instruments and the acquisition method in OpenLab CDS.

Configure instruments

Your instrument must contain a Fraction collector (FC) and a Mass Detector (MSD) module.

MSD: Check the Fraction collection enabled option to access the Mass-based fraction collection parameters section in the acquisition method.

FC: The MSD must be listed in Peak Detectors section (detected automatically).

Configure acquisition method

You have to configure two parts of the method to support MBFC:

Mass detector (MSD)
Fraction collector

Configure Mass detector (MSD)

3. Click to add a target compound(s).

4. Define the Compound name and the Monoisotopic mass or the Compound formula.
If you define a formula, OpenLab CDS calculate the Monoisotopic automatically.

Monoisotopic mass(단일 동위원소 질량)
Compound formula

화합물 이름과 단일 동위원소 질량 또는 화합물 식을 정의합니다. 화학식을 정의하면, OpenLab CDS가 단일 동위원소 질량을 자동으로 계산합니다.

=> MSD는 화합물의 질량을 기준으로 작동한다. Monoisotopic mass(단일 동위원소 질량)는 가장 흔한 동위원소들의 질량 합으로, 질량 분석에서 가장 정확한 기준점이 된다.C10H20O와 같은 분자식을 입력하면 소프트웨어 내부의 원자량 데이터베이스를 통해 질량값을 자동으로 도출하여 사용자의 편의성을 높인다.

첨가 생성물 이온(Adducts ions)과 전하 상태(Charge State)를 선택합니다. 이온들은 이온화원에서 중성 분자와 상호작용하여, 분획을 트리거하기 위해 질량 검출기에 의해 추적될 이온을 생성합니다.
화합물당 하나 또는 여러 개의 첨가 생성물을 선택할 수 있습니다. OpenLab CDS는 선택된 첨가 생성물에 따라 극성(Polarity) 열에 양이온(Positive) 또는 음이온(Negative)을 자동으로 설정합니다.

=> 질량 분석기는 중성 분자를 측정할 수 없고 '이온' 상태만 측정한다. 따라서 실제 검출되는 질량은 [M+H]+ 또는 [M+Na]+ 처럼 특정 이온이 붙은 형태(m/z)이므로 이를 정확히 지정해줘야 한다.

=> 이온화원(Ion Source) 내에서의 물리적 반응을 설명한다. 중성 상태의 시료에 양성자(H^+) 등이 결합하여 전하를 띠게 되어야만 MSD가 이를 감지하고 분획기를 작동시킬 수 있다.

=> 실제 분석 시 하나의 물질이 여러 형태의 이온(예: H^+ 결합형과 Na^+ 결합형 모두)으로 나타날 수 있으므로, 검출 확률을 높이기 위해 여러 이온을 동시에 추적하도록 설정하는 것이다.

=> 예를 들어 H^+ adduct는 양이온 모드(+), Cl^- adduct는 음이온 모드(-)에서 검출되므로 사용자의 실수를 방지하기 위해 소프트웨어가 이를 자동 매칭한다.

the MSD parameters values used by the mass detector to ionize and detect the ions (fragmentor voltage, detector gain factor, dwell time),
the Fraction target mass column among three values T1, T2 and T3.Those three values correspond to three sequence columns displayed for a MBFC instrument: SQ: T1 fraction target mass 1 to SQ: T3 fraction target mass 3. You have the option to define target masses (monoisotopic masses) to be used instead of the ones defined in the method during the sample acquisition. This allows you to override method target masses by keeping the ionization parameters, adducts and charges and MSD parameters defined in the method by the value defined in corresponding Fraction target mass column of the sequence.

Configure Fraction Collector

The Fraction collector interface supports both UV and Mass based fraction collection.

To configure the Fraction collector:

Select Enabled to activate Fraction collection (common for both UV and MS).
Select the MS tab of the table.
Fill out the corresponding fields in the table.

Use: Check as many signals as expected.
Peak Detector: Select the MSD module.
Used Signal: Select the signals configured in the Mass-based fraction collection parameters table for the Mass detector (A, B, C, D, NOT in Use Signal)
Peak Detection Mode: Select the integration parameter used to detect a peak and assign a value in the corresponding field (ex : threshold). You can define graphically the value from the Fraction preview section by using an already acquired chromatogram as template.

As calibrated (Time) uses the delay time computed by the delay calibration tool that is stored in the Fraction collector firmware

As calibrated (Time) can be used only if delay calibration was done with an acquisition method similar to the current one (same Main pump flow, Make-up pump flow, Split rate, Delay Coil).

Other options (Use Volume, As calibrated) are dedicated to UV and cannot be used for MBFC.

Home > Acquisition > Sequence > Select sequence sample types

Select sequence sample types

Sample types are used in a sequence to describe each item being processed. You select sample types in the sequence table or as part of a sequence template.

Table: Sample type descriptions

Sample

A sample with unknown amounts of analytes being analyzed.

analyte [ˈænəlaɪt] : 분석물(분석 대상 성분)

분석 중인 분석물의 양을 알 수 없는 샘플.

=> 우리가 실제로 함량을 알고자 하는 미지 시료(Unknown Sample)

Blank

분석물이 포함되지 않은 샘플로, 일반 샘플처럼 취급됩니다. 이것은 이후의 모든 샘플에 대한 신호 대 잡음(S/N) 비율의 기준 및 시스템 적합성 확인을 위해 사용됩니다. 만약 내부 표준법(ISTD)이 사용되는 경우, Blank는 일반적으로 내부 표준물질을 포함합니다.

Double blank

Sometimes called "solvent blank", it is used to prove that no chromatographic artifacts are coming from the instrument flow path for that particular column.

artifacts [ˈɑːrtɪfækt] : 아티팩트(인공적인 오류/흔적)

Double blank : 때로는 "solvent blank"라고 불리며, 특정 컬럼에 대해 기기 흐름 경로에서 크로마토그래피 가짜 피크가 나오지 않음을 증명하는 데 사용됩니다

=> 일반적인 Blank는 Analyte만 빼지만 ISTD는 넣는 경우가 많다. 하지만 Double Blank는 내부 표준물질조차 넣지 않은 순수 용매그 자체를 의미한다. 그래서 '이중으로 비어 있다'는 뜻의 Double을 쓴다.
=> Double Blank를 찍었는데도 피크가 나온다면, 그것은 시료의 문제가 아니라 기기 시스템(Flow path) 어딘가가 오염되었다는 강력한 증거가 된다.

Cal. Std. (Calibration standard)

A sample with a known amount of analyte that is used as a reference to create or update a calibration table in the processing method.

processing method에서 검량선(Calibration Table)을 작성하거나 업데이트하기 위해 참조로 사용되는, 분석물의 양을 알고 있는 샘플입니다.

QC check

A sample with a known amount of analyte that is used to verify and prove that the calibration is correct.

Calibration이 정확한지 확인하고 증명하기 위해 사용되는, 분석물의 양을 알고 있는 샘플입니다.

=> 검량선을 만든 후, 분석 중간에 이 샘플을 찍어서 기기가 여전히 정확한 값을 내고 있는지(유효성) 점검하는 용도

Spike

A sample with a known amount of standard added.

일정량의 표준물질이 첨가된 샘플.

=> Spike : 못, 찌르다

- Sample (시료): 우리가 분석하고자 하는 전체 덩어리 (예: 오렌지 주스 한 병)
- Analyte (분석물): 샘플 안에 있는 분석하고자하는 성분. (예: 주스 속 비타민 C)
- Matrix (매트릭스/기질): 샘플에서 Analyte을 제외한 나머지 모든 성분. (예: 주스 속의 물, 당분, 구연산, 색소 등)

순수용매와 다르게 실제 시료(Matrix) 안에는 분석을 방해하는 수만 가지 물질이 섞여 있다.

① 회수율(Recovery) 테스트
예를 들어, 강물에 오염물질 A가 100만큼 들어있다고 예상되는데, 전처리 과정(필터링, 가열 등)에서 20만큼 사라질 수도 있다. 이를 확인하기 위해, 아무것도 없는 깨끗한 물에 표준물질 A를 100만큼 강제로 넣고(Spiking) 분석한다.
만약 결과가 80만 나온다면 현재 분석법은 20% 정도 손실이 발생하는 것임을 알 수 있다.

② 매트릭스 방해 효과 (Matrix Effect)
똑같은 비타민 C 10mg이라도, 순수한 물에 녹였을 때와 걸쭉한 오렌지 주스에 들어있을 때 기기가 읽어내는 신호의 세기가 다를 수 있다. 주스 속의 당분이나 단백질이 기기 센서를 가리거나 반응을 방해하기 때문이다.
따라서 실제 시료에 표준품을 넣었을 때와 순수 용매에 넣었을 때의 결과값이 다르다면, 시료 속의 불순물이 분석을 방해하고 있다는 증거가 된다.

Sys Suit

A sample that is run to demonstrate that system is working correctly as expected. This sample is typically run before running other samples.

시스템이 예상대로 올바르게 작동하고 있음을 증명하기 위해 실행되는 샘플. 이 샘플은 일반적으로 다른 샘플을 실행하기 전에 실행됩니다.

Home > Acquisition > Sequence > Sample tray
Sample tray

Sample tray

Home > Acquisition > Sequence > Sample tray > View sample trays

View sample trays

1. Create or open a sequence.

2. Click Show sample trays.

3. The sample tray appears as a floating window that you can click and drag to any location. Sample trays are displayed on the left, and fraction/recovery trays are shown on the right.

샘플 트레이는 클릭하여 원하는 위치로 드래그할 수 있는 플로팅 창(부유 창) 형태로 나타납니다. 샘플 트레이는 왼쪽에 표시되고, 분취/회수 트레이는 오른쪽에 표시됩니다.

Set up the 3D image to match the physical trays in your Multisampler. If you are using a standard sampler, the correct tray type will automatically be detected by the instrument and display.

실제 멀티샘플러에 있는 물리적 트레이와 일치하도록 3D 이미지를 설정하십시오. 표준 샘플러를 사용하는 경우, 장비가 올바른 트레이 유형을 자동으로 감지하여 표시합니다.

To select the specific tray being used in the Multisampler, select the tray in the 3D image, and select the tray type from the drop-down list.

멀티샘플러에서 사용 중인 특정 트레이를 선택하려면, 3D 이미지에서 트레이를 선택한 후 드롭다운 목록에서 트레이 유형을 선택하십시오.

트레이 유형을 변경하면 사용 가능한 바이알 번호도 변경될 수 있습니다. 시퀀스 테이블에 트레이에 존재하지 않는 바이알 위치로 할당된 주입 항목이 포함되어 있으면, 해당 시퀀스 행은 유효하지 않게 되며 시퀀스를 실행할 수 없습니다. 행을 유효하게 만들려면 바이알 위치를 변경하거나 유효하지 않은 행을 삭제하십시오.

To add a tray to a Multisampler 3D image, select a blank space in the 3D image, and select the tray type from the drop-down list.

4. Select a tray in the 3D image to view the sample configuration for that tray. The tray highlighted in blue is the tray configuration displayed.

해당 트레이의 샘플 구성을 보려면 3D 이미지에서 트레이를 선택하십시오. 파란색으로 강조된 트레이가 현재 표시되고 있는 트레이 구성입니다.

시퀀스 테이블에 행을 추가하거나 시퀀스 테이블에서 샘플 유형을 변경하면, 트레이의 바이알 위치가 자동으로 업데이트됩니다. 동일한 바이알 위치에 여러 행이 있는 경우, 가장 최근 주입 행의 샘플 유형이 바이알 위치의 색상을 결정합니다.

The vial location in the sample tray displays a color based on the sample type and injection status:

Red highlight: Aborted
Light blue highlight Acquiring
Light green highlight: Acquired
Green: Sample
Blue: Calibration standard
Grey: Blank
Purple: QC check
Orange: Double blank
Magenta: Spike
Brown: System Suit
Clear/white: None

Home > Acquisition > Sequence > Sample tray > Use the sample tray to select sequence via vials

Use the sample tray to select sequence via vials

샘플 트레이에서 그래픽으로 바이알 위치를 선택하여 시퀀스 테이블에 정의할 수 있습니다. 샘플 트레이는 분취 시작 및 회수 위치의 그래픽 선택도 허용합니다. 샘플 트레이에서의 선택은 샘플 바이알, 분취 시작 위치 및 회수 위치 값을 신속하게 채우는 데 사용될 수 있습니다.

When one row is selected in the Sequence table, select a vial, fraction, or recovery location in the sample tray to update the value in the Sequence table for the selected line.

시퀀스 테이블에서 한 행이 선택되었을 때, 샘플 트레이에서 바이알, 분취 또는 회수 위치를 선택하면 선택된 줄의 시퀀스 테이블 값이 업데이트됩니다.

When any number of rows are selected in the Sequence table, the corresponding vials are highlighted in the sample tray by a blue circle.

시퀀스 테이블에서 임의의 수의 행이 선택되면, 해당 바이알은 샘플 트레이에서 파란색 원으로 강조 표시됩니다.

시퀀스 테이블에서 여러 행이 선택되었을 때, 샘플 트레이에서 선택 영역을 클릭하고 드래그하면 선택된 바이알들로 선택된 행들이 업데이트됩니다.

=> 일괄 할당(Bulk Assignment) 기능. 예를 들어 테이블에서 10줄을 선택하고 트레이에서 바이알 10개를 드래그하면 순서대로 번호가 매겨진다.

바이알은 샘플 트레이에서 드래그하는 동안 표시되는 패턴에 따라 순차적으로 정의됩니다.

=> 사용자가 지그재그나 가로, 세로 방향으로 드래그할 때 화면에 미리 보이는 진행 방향(Pattern) 그대로 시퀀스 번호가 부여된다.

분취 시작 또는 회수 위치를 업데이트할 때는 여러 행에 대한 클릭 및 드래그 선택을 사용할 수 없습니다.

=> 분취 위치만큼은 한 줄 한 줄 직접 확인하며 입력해야함.

If more vial locations are selected in the sample tray than there are number of rows selected in the Sequence table, additional lines are added to the Sequence table.

시퀀스 테이블에서 선택된 행의 수보다 샘플 트레이에서 더 많은 바이알 위치가 선택되면, 시퀀스 테이블에 추가 행이 추가됩니다.

=> 자동 행 생성(Auto-generation) 기능. 예를 들어 테이블에서 5줄만 만들어놨어도 트레이에서 10개를 드래그하면, 나머지 5줄이 자동으로 시퀀스 테이블에 생성된다.